Я использую пакет Bioconductor CMA для выполнения внутренней перекрестной проверки Монте-Карло (MCCV) на классификаторах SVM в наборе данных микрочипов.CMA внутренне использует пакет e1071 R для работы SVM.
Набор данных имеет 387 переменных (атрибутов) для 45 выборок (наблюдений), которые принадлежат одному из двух классов (метки 0 или 1; примерно 1: 1).пропорция).Все данные являются числовыми без NA.Я пробую 1000-итерационный MCCV с 15 переменными, выбранными для SVM, используя статистику лиммы для дифференциального анализа экспрессии генов.Во время MCCV часть набора из 45 выборок используется для обучения классификатора SVM, который затем используется для проверки оставшейся доли, и я пробую разные значения для доли обучающего набора.CMA также выполняет проверки по внутреннему контуру (по умолчанию 3-кратная перекрестная проверка в обучающих наборах), чтобы точно настроить классификаторы, которые будут использоваться для перекрестной проверки по проверочным наборам.Все это делается из пакета CMA.
Иногда при малых размерах обучающего набора CMA выдает ошибку в консоли и останавливает выполнение остальной части кода для классификации.
[snip]tuning iteration 575
tuning iteration 576
tuning iteration 577
Error in predict.svm(ret, xhold, decision.values = TRUE) : Model is empty!
Это происходит даже тогда, когда я использую тест, отличный от лиммы, для выбора переменных или использую две вместо 15 переменных для генерации классификатора.Код R, который я использую, должен гарантировать, что обучающие наборы всегда имеют членов обоих классов.Буду признателен за любую информацию по этому вопросу.
Ниже приведен код R, который я использую, с Mac OS X 10.6.6, R 2.12.1, Biobase 2.10.0, CMA 1.8.1, limma 3.6.9,и WilcoxCV 1.0.2.Файл данных hy3ExpHsaMir.txt можно загрузить из http://rapidshare.com/files/447062901/hy3ExpHsaMir.txt.
Все идет нормально, пока g не станет 9 в для (g в 0:10) цикла (для изменения размеров обучения / тестового набора).
# exp is the expression table, a matrix; 'classes' is list of known classes
exp <- as.matrix(read.table(file='hy3ExpHsaMir.txt', sep='\t', row.names=1, header=T, check.names=F))
#best is to use 0 and 1 as class labels (instead of 'p', 'g', etc.) with 1 for 'positive' items (positive for recurrence, or for disease, etc.)
classes <- c(1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 1, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0)
yesPredVal = 1 # class label for 'positive' items in 'classes'
library(CMA)
library(WilcoxCV)
myNumFun <- function(x, y){round(y(as.numeric(x), na.rm=T), 4)}
set.seed(631)
out = ''
out2 = '\nEffect of varying the training-set size:\nTraining-set size\tSuccessful iterations\tMean acc.\tSD acc.\tMean sens.\tSD sens.\tMean spec.\tSD spec.\tMean PPV\tSD PPV\tMean NPV\tSD NPV\tTotal genes in the classifiers\n'
niter = 1000
diffTest = 'limma'
diffGeneNum = 15
svmCost <- c(0.1, 0.2, 0.5, 1, 2, 5, 10, 20, 50)
for(g in 0:10){ # varying the training/test-set sizes
ntest = 3+g*3 # test-set size
result <- matrix(nrow=0, ncol=7)
colnames(result) <- c('trainSetSize', 'iteration', 'acc', 'sens', 'spec', 'ppv', 'npv')
diffGenes <- numeric()
# generate training and test sets
lsets <- GenerateLearningsets(n=ncol(exp), y=classes, method=c('MCCV'), niter=niter, ntrain=ncol(exp)-ntest)
# actual prediction work
svm <- classification(t(exp), factor(classes), learningsets=lsets, genesellist= list(method=diffTest), classifier=svmCMA, nbgene= diffGeneNum, tuninglist=list(grids=list(cost=svmCost)), probability=TRUE)
svm <- join(svm)
# genes in classifiers
svmGenes <- GeneSelection(t(exp), classes, learningsets=lsets, method=diffTest)
actualIters=0
for(h in 1:niter){
m <- ntest*(h-1)
# valid SVM classification requires min. 2 classes
if(1 < length(unique(classes[-lsets@learnmatrix[h,]]))){
actualIters = actualIters+1
tp <- tn <- fp <- fn <- 0
for(i in 1:ntest){
pred <- svm@yhat[m+i]
known <- svm@y[m+i]
if(pred == known){
if(pred == yesPredVal){tp <- tp+1}
else{tn <- tn+1}
}else{
if(pred == yesPredVal){fp <- fp+1}
else{fn <- fn+1}
}
}
result <- rbind(result, c(ncol(exp)-ntest, h, (tp+tn)/(tp+tn+fp+fn), tp/(tp+fn), tn/(tn+fp), tp/(tp+fp), tn/(tn+fn)))
diffGenes <- c(diffGenes, toplist(svmGenes, k=diffGeneNum, iter=h, show=F)$index)
} # end if valid SVM
} # end for h
# output accuracy, etc.
out = paste(out, 'SVM MCCV using ', niter, ' attempted iterations and ', actualIters, ' successful iterations, with ', ncol(exp)-ntest, ' of ', ncol(exp), ' total samples used for training:\nThe means (ranges; SDs) of prediction accuracy, sensitivity, specificity, PPV and NPV in fractions are ',
myNumFun(result[, 'acc'],mean), ' (', myNumFun(result[, 'acc'], min), '-', myNumFun(result[, 'acc'], max), '; ', myNumFun(result[, 'acc'], sd), '), ',
myNumFun(result[, 'sens'], mean), ' (', myNumFun(result[, 'sens'], min), '-', myNumFun(result[, 'sens'], max), '; ', myNumFun(result[, 'sens'], sd), '), ',
myNumFun(result[, 'spec'], mean), ' (', myNumFun(result[, 'spec'], min), '-', myNumFun(result[, 'spec'], max), '; ', myNumFun(result[, 'spec'], sd), '), ',
myNumFun(result[, 'ppv'], mean), ' (', myNumFun(result[, 'ppv'], min), '-', myNumFun(result[, 'ppv'], max), '; ', myNumFun(result[, 'ppv'], sd), '), and ',
myNumFun(result[, 'npv'], mean), ' (', myNumFun(result[, 'npv'], min), '-', myNumFun(result[, 'npv'], max), '; ', myNumFun(result[, 'npv'], sd), '), respectively.\n', sep='')
# output classifier genes
diffGenesUnq <- unique(diffGenes)
out = paste(out, 'A total of ', length(diffGenesUnq), ' genes occur in the ', actualIters, ' classifiers, with occurrence frequencies in fractions:\n', sep='')
for(i in 1:length(diffGenesUnq)){
out = paste(out, rownames(exp)[diffGenesUnq[i]], '\t', round(sum(diffGenes == diffGenesUnq[i])/actualIters, 3), '\n', sep='')
}
# output split-size effect
out2 = paste(out2, ncol(exp)-ntest, '\t', actualIters, '\t', myNumFun(result[, 'acc'], mean), '\t', myNumFun(result[, 'acc'], sd), '\t', myNumFun(result[, 'sens'], mean), '\t', myNumFun(result[, 'sens'], sd), '\t', myNumFun(result[, 'spec'], mean), '\t', myNumFun(result[, 'spec'], sd), '\t', myNumFun(result[, 'ppv'], mean), '\t', myNumFun(result[, 'ppv'], sd),
'\t', myNumFun(result[, 'npv'], mean), '\t', myNumFun(result[, 'npv'], sd), '\t', length(diffGenesUnq), '\n', sep='')
} # end for g
cat(out, out2, sep='')
Выход для traceback ():
20: stop("Model is empty!")
19: predict.svm(ret, xhold, decision.values = TRUE)
18: predict(ret, xhold, decision.values = TRUE)
17: na.action(predict(ret, xhold, decision.values = TRUE))
16: svm.default(cost = 0.1, kernel = "linear", type = "C-classification", ...
15: svm(cost = 0.1, kernel = "linear", type = "C-classification", ...
14: do.call("svm", args = ll)
13: function (X, y, f, learnind, probability, models = FALSE, ...) ...
12: function (X, y, f, learnind, probability, models = FALSE, ...) ...
11: do.call(classifier, args = c(list(X = X, y = y, learnind = learnmatrix[i, ...
10: classification(X = c(83.5832768669369, 83.146333099001, 94.253534443549, ...
9: classification(X = c(83.5832768669369, 83.146333099001, 94.253534443549, ...
8: do.call("classification", args = c(list(X = Xi, y = yi, learningsets = lsi, ...
7: tune(grids = list(cost = c(0.1, 0.2, 0.5, 1, 2, 5, 10, 20, 50...
6: tune(grids = list(cost = c(0.1, 0.2, 0.5, 1, 2, 5, 10, 20, 50...
5: do.call("tune", args = c(tuninglist, ll))
4: classification(X, y = as.numeric(y) - 1, learningsets = learningsets, ...
3: classification(X, y = as.numeric(y) - 1, learningsets = learningsets, ...
2: classification(t(exp), factor(classes), learningsets = lsets, ...
1: classification(t(exp), factor(classes), learningsets = lsets, ...